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Damage-associated molecular pattern (DAMP, englisch für „Schaden-assoziierte molekulare Muster“, auch englisch danger-associated molecular patterns, danger signals, alarmins) bezeichnen in der Biochemie und Immunologie molekulare Strukturen, die bei Zellschäden (Apoptose, Nekrose, Ferroptose, Pyroptose)cite-ref-pmid31612270-1-0[1]cite-ref-pmid35501340-2-0[2]cite-ref-pmid35431566-3-0[3]cite-ref-pmid35300338-4-0[4] und Infektionencite-ref-pmid31736963-5-0[5] auftreten und eine angeborene Immunantwort auslösen.

• Eigenschaften

• Menschen

• Pflanzen

• Einzelnachweise

Im Gegensatz zu den PAMPs (Pathogen-assoziierte molekulare Muster) sind DAMPs zelleigene Molekülstrukturen, die von einer beschädigten Zelle freigesetzt werden und die angeborene Immunantwort im Schadensfall aktivieren.cite-ref-roh-6-0[6] Durch die Bindung des DAMPs an einen DAMP-Rezeptor entsteht eine Entzündungsreaktioncite-ref-roh-6-1[6]cite-ref-pmid35846433-7-0[7] mit erhöhter Autophagie.cite-ref-pmid22889221-8-0[8] Aufgrund ihrer entzündungsverstärkenden Wirkung sind manche DAMPs an manchen Formen der Immunpathogenese beteiligt, beispielsweise unter Beteiligung von neutrophil extracellular Traps,cite-ref-pmid35741047-9-0[9] oder bei Autoimmunerkrankungen.cite-ref-pmid35853572-10-0[10]

| Ursprung | Zellkompartiment | DAMPs | Rezeptoren |

|---|---|---|---|

| Extrazelluläre Matrix | | Biglycan | TLR2, TLR4, NLRP3 |

| | | Decorin | TLR2, TLR4 |

| | | Versican | TLR2, TLR6, CD14 |

| | | LMW- Hyaluronan | TLR2, TLR4, NLRP3 |

| | | Heparansulfat | TLR4 |

| | | Fibronectin (EDA-Domäne) | TLR4 |

| | | Fibrinogen | TLR4 |

| | | Tenascin C | TLR4 |

| Intrazelluläre Kompartimente | Zytosol | Harnsäure | NLRP3, P2X7 |

| | | S100-Proteine | TLR2, TLR4, RAGE |

| | | Hitzeschockproteine | TLR2, TLR4, CD91 |

| | | ATP | P2X7, P2Y2 |

| | | F- Aktin | DNGR-1 |

| | | Cyclophilin A | CD147 |

| | | Aβ | TLR2, NLRP1, NLRP3, CD36 , RAGE |

| | Zellkern | Histone | TLR2, TLR4 |

| | | HMGB1 | TLR2, TLR4, RAGE |

| | | HMGN1 | TLR4 |

| | | IL-1α | IL-1R |

| | | IL-33 | ST2 |

| | | SAP130 | Mincle |

| | | DNA | TLR9, AIM2 |

| | | RNA | TLR3, TLR7, TLR8, RIG-I , MDA5 |

| | Mitochondrien | mtDNA | TLR9 |

| | | TFAM | RAGE |

| | | Formylpeptide | FPR1 |

| | | mROS | NLRP3 |

| | Endoplasmatisches Retikulum | Calreticulin | CD91 |

| | Granula | Defensine | TLR4 |

| | | Cathelicidin (LL37) | P2X7, FPR2 |

| | | Eosinophil-derived neurotoxin | TLR2 |

| | | Granulysin | TLR4 |

| | Plasmamembran | Syndecane | TLR4 |

| | | Glypicane | TLR4 |

| Kategorie | DAMP | Molekular Struktur | Ursprung oder Vorläufer | Rezeptor oder Signalmolekül | Pflanzen |

|---|---|---|---|---|---|

| Epidermis Cuticula | Cutinmonomere | C16 and C18 Hydroxy- und Epoxy- Fettsäuren | Epidermis- Cuticula | Unbekannt | Arabidopsis thaliana , Solanum lycopersicum |

| Zellwand - Polysaccharid -Abbauprodukte | OG | Polymere von 10–15 α-1-4-verknüpfter GalA | Zellwand- Pektin | WAK1 ( A. thaliana ) | A. thaliana , G. max , N. tabacum |

| | Cellobioseoligomere | Polymere von 2-7 β-1,4-verknüpfter Glucoses | Zellwand- Zellulose | Unbekannt | A. thaliana |

| | Xyloglucan-Oligosaccharide | Polymere von β-1,4-verknüpfter Glucose mit Xylose, Galactose und Fructose als Seitenkette | Zellwand- Hemicellulose | Unbekannt | A. thaliana , Vitis vinifera |

| | Methanol | Methanol | Zellwand- Pektin | Unbekannt | A. thaliana , Nicotiana tabacum |

| Apoplastische Peptide und Proteine | CAPE1 | 11-Aminosäuren-Peptide | Apoplastisches PR1 | Unbekannt | A. thaliana , S. lycopersicum |

| | GmSUBPEP | 12-Aminosäuren-Peptid | Apoplastische Subtilase | Unbekannt | Glycine max |

| | GRIp | 11-Aminosäuren-Peptid | Zytosolisches GRI | PRK5 | A. thaliana |

| | Systemin | 18-Aminosäuren-Peptid ( S. lycopersicum ) | Zytosolisches Prosystemin | SYR1/2 ( S. lycopersicum ) | Manche Nachtschattenarten |

| | HypSys | 15-, 18- oder 20-Aminosäuren-Peptide | Apoplastisches oder zytosolisches preproHypSys | Unbekannt | Some Solanaceae species |

| | Peps | 23~36-Aminosäuren-Peptide ( A. thaliana ) | Zytosolische und vakuoläre PROPEPs | PEPR1/2 ( A. thaliana ) | A. thaliana , Zea mays , S. lycopersicum , Oryza sativa |

| | PIP1/2 | 11-Aminosäuren-Peptide | Apoplastisches preproPIP1/2 | RLK7 | A. thaliana |

| | GmPep914/890 | 8-aa peptide | Apoplastisches oder zytosolisches GmproPep914/890 | Unbekannt | G. max |

| | Zip1 | 17-Aminosäuren-Peptid | Apoplastisches PROZIP1 | Unbekannt | Z. mays |

| | IDL6p | 11-Aminosäuren-Peptid | Apoplastische oder zytosolische IDL6-Vorläufer | HEA/HSL2 | A. thaliana |

| | RALFs | ~50-Aminsäuren Cystein-reiche Peptide | Apoplastische oder zytosolische RALF-Vorläufer | FER ( A. thaliana ) | A. thaliana , N. tabacum , S. lycopersicum |

| | PSKs | 5-Aminosäuren-Peptid | Apoplastische oder zytosolische PSK-Vorläufer | PSKR1/2 ( A. thaliana ) | A. thaliana , S. lycopersicum |

| | HMGB3 | HMGB3 protein | HMGB3 | Unbekannt | A. thaliana |

| | Inceptin | 11-Aminosäuren-Peptid | Chloroplastic ATP synthase γ-subunit | Unbekannt | Vigna unguiculata |

| Extrazelluläre Nukleotide | eATP | ATP | Zytosolisches ATP | DORN1/P2K1 ( A. thaliana ) | A. thaliana , N. tabacum |

| | eNAD(P) | NAD(P) | Zytosolisches NAD(P) | LecRK-I.8 | A. thaliana |

| | eDNA | DNA-Fragmente < 700 bp | DNA | Unbekannt | Phaseolus vulgaris , P. lunatus , Pisum sativum , Z. mays |

| Extrazelluläre Zucker | Extrazelluläre Zucker | Saccharose , Glucose , Fructose , Maltose | Zytosolische Zucker | RGS1 ( A. thaliana ) | A. thaliana , N. tabacum , Solanum tuberosum |

| Extrazelluläre Aminosäuren und Glutathione | Proteinogene Aminosäuren | Glutaminsäure , Cystein , Histidin , Asparaginsäure | Zytosolische Aminosäuren | GLR3.3/3.6 or others ( A. thaliana ) | A. thaliana , S. lycopersicum , Oryza sativa |

| | Glutathion | Glutathion | Zytosolisches Glutathione | GLR3.3/3.6 ( A. thaliana ) | A. thaliana |

cite-note-pmid31612270-11. ↑ B. Relja, W. G. Land: Damage-associated molecular patterns in trauma. In: European journal of trauma and emergency surgery: official publication of the European Trauma Society. Band 46, Nummer 4, August 2020, S. 751–775; doi:10.1007/s00068-019-01235-w, PMID 31612270, PMC 7427761 (freier Volltext).

cite-note-pmid35501340-22. ↑ A. Mázló, V. Jenei, S. Burai, T. Molnár, A. Bácsi, G. Koncz: Types of necroinflammation, the effect of cell death modalities on sterile inflammation. In: Cell death & disease. Band 13, Nummer 5, Mai 2022, S. 423, doi:10.1038/s41419-022-04883-w, PMID 35501340, PMC 9061831 (freier Volltext).

cite-note-pmid35431566-33. ↑ Z. Song, J. Zou, M. Wang, Z. Chen, Q. Wang: A Comparative Review of Pyroptosis in Mammals and Fish. In: Journal of inflammation research, Band 15, 2022, S. 2323–2331; doi:10.2147/JIR.S361266, PMID 35431566, PMC 9012342 (freier Volltext).

cite-note-pmid35300338-44. ↑ W. Xu, Y. Huang: Regulation of Inflammatory Cell Death by Phosphorylation. In: Frontiers in immunology. Band 13, 2022, S. 851169, doi:10.3389/fimmu.2022.851169, PMID 35300338, PMC 8921259 (freier Volltext).

cite-note-pmid31736963-55. ↑ N. L. Denning, M. Aziz, S. D. Gurien, P. Wang: DAMPs and NETs in Sepsis. In: Frontiers in immunology. Band 10, 2019, S. 2536, doi:10.3389/fimmu.2019.02536, PMID 31736963, PMC 6831555 (freier Volltext).

cite-note-roh-66. ↑ J. S. Roh, D. H. Sohn: Damage-Associated Molecular Patterns in Inflammatory Diseases. In: Immune network. Band 18, Nummer 4, August 2018, S. e27, doi:10.4110/in.2018.18.e27, PMID 30181915, PMC 6117512 (freier Volltext).

cite-note-pmid35846433-77. ↑ R. Leinardi, C. Longo Sanchez-Calero, F. Huaux: Think Beyond Particle Cytotoxicity: When Self-Cellular Components Released After Immunogenic Cell Death Explain Chronic Disease Development. In: Frontiers in toxicology. Band 4, 2022, S. 887228, doi:10.3389/ftox.2022.887228, PMID 35846433, PMC 9284505 (freier Volltext).

cite-note-pmid22889221-88. ↑ D. Tang, R. Kang, C. B. Coyne, H. J. Zeh, M. T. Lotze: PAMPs and DAMPs: signal 0s that spur autophagy and immunity. In: Immunological reviews. Band 249, Nummer 1, September 2012, S. 158–175, doi:10.1111/j.1600-065X.2012.01146.x, PMID 22889221, PMC 3662247 (freier Volltext) (Review).

cite-note-pmid35741047-99. ↑ H. Block, J. Rossaint, A. Zarbock: The Fatal Circle of NETs and NET-Associated DAMPs Contributing to Organ Dysfunction. In: Cells. Band 11, Nummer 12, 06 2022, doi:10.3390/cells11121919, PMID 35741047, PMC 9222025 (freier Volltext).

cite-note-pmid35853572-1010. ↑ M. G. Danieli, E. Antonelli, M. A. Piga, I. Claudi, D. Palmeri, A. Tonacci, A. Allegra, S. Gangemi: Alarmins in autoimmune diseases. In: Autoimmunity Reviews. [elektronische Veröffentlichung vor dem Druck] Juli 2022, doi:10.1016/j.autrev.2022.103142, PMID 35853572.

cite-note-pmid27782807-111. H. W. Choi, D. F. Klessig: DAMPs, MAMPs, and NAMPs in plant innate immunity. In: BMC plant biology. Band 16, Nummer 1, 10 2016, S. 232, doi:10.1186/s12870-016-0921-2, PMID 27782807, PMC 5080799 (freier Volltext) (Review).